PROGRAMACIÓN DEL MÓDULO: BIOLOGÍA MOLECULAR (CICLO DE LABORATORIO CLÍNICO Y BIOMÉDICO) - PDF Descargar libre (2023)

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1 ww.altamar.es PROGRAMACIÓN DEL MÓDULO: BIOLOGÍA MOLECULAR (CICLO DE LABORATORIO CLÍNICO Y BIOMÉDICO) INDICE 0. Introducción 1. Contenidos 2. Temporalización 3. Metodología didáctica 4. Materiales, textos y recursos didácticos 5. Competencias clave 6. Criterios de evaluación 7. Resultados de aprendizaje 8. Procedimientos e instrumentos de evaluación 9. Criterios de calificación 10. Procedimiento de recuperación de evaluaciones pendientes 11. Procedimientos y actividades de recuperación del módulo pendiente 12. Prueba extraordinaria 13. Procedimiento para que el alumno y las familias conozcan aspectos relacionados con la programación 14. Medidas ordinarias de atención a la diversidad 15. Adaptaciones curriculares 16. Actividades complementarias y extraescolares 17. Actividades para el fomento de la lectura 18. Medidas para evaluar la aplicación de la programación didáctica y la práctica docente 1 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

2 0- INTRODUCCIÓN La presente programación está basada en el Real Decreto 771/2014, de 12 de septiembre, por el que se establece el título de Técnico Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico, en el que se fijan sus enseñanzas mínimas, y el Decreto 179/2015, de 29 de julio, (BOCM nº 182,de 3 de agosto 2015) por el que se establece para la Comunidad de Madrid el Plan de Estudios del Ciclo Formativo de Grado Superior correspondiente al título de Técnico Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico. Módulo Profesional Ciclo formativo 03 Biología Molecular y Citogenética (Código1369) Técnico Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico Grado Superior Familia Profesional Sanidad Duración básica 195 horas Duración completa 195 horas Especialidad del profesorado Tipo de módulo 2 Procedimientos de Diagnóstico Clínico y Ortoprotésico Procedimientos Sanitarios y Asistenciales Transversal Identificación del título El título de Técnico Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico queda identificado por los siguientes elementos: Denominación: Laboratorio Clínico y Biomédico. Nivel: Formación Profesional de Grado Superior. Duración: 2000 horas. Familia Profesional: Sanidad. Referente en la Clasificación Internacional Normalizada de la Educación: CINE-5b. Nivel del Marco Español de Cualificaciones para la educación superior: Nivel 1 Técnico Superior. Unidades de competencia asociadas al módulo: El presente módulo guarda relación con las siguientes unidades de competencia: UC0373_3: Realizar análisis hematológicos y genéticos en muestras biológicas humanas y procedimientos para obtener hemoderivados. UC0381_3: Aplicar técnicas de inmunohistoquímica, inmunofluorescencia y biología molecular, bajo la supervisión del facultativo. UC0055_3: Realizar ensayos biotecnológicos, informando de los resultados. 1- CONTENIDOS Reflejados en la tabla adjunta. 2- TEMPORALIZACIÓN El módulo de Biología molecular y citogenética con un cómputo lectivo total de 195 horas, se estructurará en tres evaluaciones. El tiempo, en horas, asignado a cada unidad didáctica es orientativo y dependerá del nivel medio y grado de aprendizaje de la mayoría del grupo de alumnos. Se ha tenido en cuenta el tiempo, aunque escaso, necesario para la realización de prácticas, controles, evaluaciones y repasos.

3 ww.altamar.es U.T. 1 Caracterización de los procesos que se realizan en los laboratorios de 15 citogenética y biología molecular U.T. 2 Cultivos celulares 20 U.T. 3 Principios básicos de citogenética 15 U.T. 4 Citogenética humana y análisis cromosómico 20 U.T.5 Ácidos nucleicos y enzimas asociadas 15 U.R.6 Extracción y purificación de ácidos nucleicos 30 U.T. 7 Hibridación de ácidos nucleicos 15 U.T. 8 Técnicas de hibridación de ácidos nucleicos 15 U.T. 9 Las técnicas de PCR y la electroforesis 20 U.T.10 Clonación de ácidos nucleicos 10 U.T.11 Métodos de secuenciación de ácidos nucleicos 10 U.T.12 Aplicación de las técnicas de biología molecular a la medicina forense 10 TOTAL HORAS 195 BLOQUE 1: EL LABORATORIO DE CITOGENÉTICA Y BIOLOGÍA MOLECULAR Unidad 1: Laboratorios de biología molecular y citogenética BLOQUE 2: CULTIVOS CELULARES Unidad 2: Cultivos celulares: BLOQUE 3: CITOGENÉTICA Unidad 3: Principios básicos de citogenética Unidad 4: Citogenética humana y análisis cromosómico BLOQUE 4: BIOLOGÍA MOLECULAR Unidad 5: Ácidos nucleicos y enzimas asociadas Unidad 6: Extracción y purificación de ácidos nucleicos Unidad 7: Hibridación de ácidos nucleicos Unidad 8: Técnicas de hibridación de ácidos nucleicos Unidad 9: Las técnicas de PCR y la electroforesis Unidad 10: Clonación de ácidos nucleicos Unidad 11: Métodos de secuenciación de ácidos nucleicos Unidad 12: Aplicación de las técnicas de biología molecular a la medicina forense La temporalización de las unidades se realizará de la siguiente forma: 3 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

4 1ª EVALUACIÓN: Unidades 1, 2, 3 y parte de la 4 2ª EVALUACIÓN: Unidades Resto de la unidad 4, 5, 6 y 7 3ª EVALUACIÓN: Unidades 8, 9, 10,11 y 12 CONTENIDOS MÍNIMOS Unidad 1. Caracterización de los procesos que se realizan en los laboratorios de citogenética y biología molecular: Organización y funciones del laboratorio de citogenética y cultivo celular. Materiales y equipo básico. Organización y funciones del laboratorio de biología molecular. Materiales y equipo básico. Normas de manipulación del material estéril. Técnica aséptica. Seguridad en los laboratorios de citogenética y biología molecular. Eliminación de residuos peligrosos. Uso eficiente de los recursos. Unidad 2. Realización de cultivos celulares: Tipos de cultivo celular en citogenética: líquido amniótico, vellosidad corial y sangre periférica. Tipos de células. Medios de cultivo. Técnicas de obtención, mantenimiento y propagación de cultivos. Determinación del número y viabilidad celular. Contaminación en los cultivos celulares. Unidades 3 y 4. Aplicación de técnicas de análisis cromosómico: Técnica de obtención de extensiones cromosómicas. Cultivo y sacrificio celular. Métodos de tinción y bandeado cromosómico: patrones de identificación. Nomenclatura citogenética. Automatización del análisis citogenético. Alteraciones cromosómicas: numéricas y estructurales. Diagnóstico prenatal: métodos y aplicaciones. Citogenética y cáncer. Unidades 5 y 6. Aplicación de técnicas de extracción de ácidos nucléicos: Características estructurales y funcionales de los ácidos nucleicos. Propiedades físicas relacionadas con las técnicas de biología molecular: densidad, desnaturalización, absorbancia, cinética de renaturalización e hibridación. Endonucleasas de restricción y otras enzimas asociadas a los ácidos nucleicos. Mutaciones y polimorfismos. Técnicas de extracción de ADN en sangre periférica, biopsias y tejidos. Extracción de ARN. Sistemas automáticos de extracción de ácidos nucleicos. Unidades 7 y 8. Aplicación de técnicas de hibridación con sonda: - Tipos de sonda y tipos de marcaje. Procedimiento de hibridación: fases. Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos en soporte sólido: Southern y 4

5 ww.altamar.es Northern blot. Microarrays. Técnicas de hibridación en cromosomas y tejidos: FISH y variantes. HGC (hibridación genómica comparada). FINCTION. Unidad 9. Aplicación de técnicas de PCR y electroforesis al estudio de los ácidos nucléicos: Técnicas de PCR y variantes: PCR multiplex, RT-PCR, PCR nested y PCR a tiempo real. Técnicas de electroforesis en gel. Técnicas de visualización de fragmentos e interpretación de resultados. Aplicaciones diagnósticas y forenses de las técnicas de PCR. Unidades 10, 11 y 12. Determinación de métodos de clonación y secuenciación del ADN: Clonación: componentes y fases del procedimiento de clonación. Bioinformática: análisis de bases de datos de ADN y proteínas. Métodos de secuenciación de ADN: Métodos de secuenciación manual. Secuenciación automática. Pirosecuenciación. Otros análisis realizados con el secuenciador: Análisis de fragmentos. MLPA (dosis génica). Aplicación de las técnicas de biología molecular en el diagnóstico clínico: Diagnóstico prenatal y preimplantacionall. Diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas, cardiovasculares y metabólicas. Neoplasias. Diagnóstico y pronóstico. Diagnóstico microbiológico. Aplicaciones de las técnicas de biología molecular en medicina legal y forense. 3- METODOLOGÍA DIDÁCTICA La metodología que empleamos supone una estrategia para que los alumnos aprendan y comprendan significativamente todos los contenidos educativos: hechos, conceptos, principios, terminología, etc. Para que el aprendizaje sea eficaz, es necesario establecer una conexión entre todos los contenidos que se presentan a lo largo del periodo en el que se imparte la materia. La teoría y la práctica, como aspectos de un mismo proceso de aprendizaje, deben constituir un continuum que facilite la realización de las actividades que lleven a cabo los alumnos La experimentación como parte importante de la actividad educativa, debe permitir la profundización en el análisis de objetos, funciones, sistemas o documentos. En todo momento se pretenderá que el proceso sea dinámico y participativo, de forma que aprendan los alumnos y los profesores. Los aspectos de algunas unidades de trabajo que no puedan ser abordados en nuestro laboratorio, por ser técnicas muy caras o que requieran un material que no poseemos (como, por ejemplo, las técnicas de secuenciación del ADN) se intentará que sean revisados cuando los alumnos realicen el módulo de la FCT. 5 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

6 Al comienzo del curso se les indicará a los alumnos que deben comprar una bata de laboratorio, unas gafas de protección, una mascarilla tipo II, una pera de aspiración y una caja de guantes, así como rotulador de vidrio. Así mismo se les indicará la necesidad de vacunarse de la Hepatitis B. Dichas normas tienen por finalidad salvaguardar la integridad del alumno, ya que estamos trabajando con muestras biológicas y productos químicos que son potencialmente infectivos y/o peligrosos. Para adquirir la competencia de aprender a aprender, se les indicará a los alumnos la necesidad de confeccionar resúmenes y esquemas o mapas conceptuales de las unidades didácticas, así como preguntas tipo test de cada unidad. En las que sea posible, los alumnos confeccionarán bancos de imágenes capturadas con cámaras digitales, sobre material de laboratorio, imágenes de diferentes prácticas, etc que podrán ser aprovechadas para generar presentaciones en power point, exámenes, o para confeccionar el cuaderno de prácticas del alumno. Todas las aportaciones que hagan los alumnos serán tenidas en cuenta en el apartado B de los criterios de calificación, como figura en la presente programación. Con relación a la competencia digital y el tratamiento de la información, desde el módulo presente fomentaremos el uso de las nuevas tecnologías. Utilizaremos en diversas ocasiones cañones de proyección para el debate sobre casos prácticos, para las presentaciones en PowerPoint, y para la el tratamiento de la información. A través de los cañones, trabajaremos con los alumnos diversas páginas de Internet de interés en biología molecular, y programas interactivos. Si fuera preciso, utilizaríamos el aula de ordenadores que tiene el centro. En los trabajos que les hagamos preparar a los alumnos, se valorará positivamente la utilización de medios audiovisuales para su presentación. En relación con la competencia de comunicación lingüística, en este módulo vamos a valorar especialmente la buena ortografía, caligrafía y redacción, de todos aquellos trabajos, resúmenes, esquemas y producciones de los alumnos. Así mismo, se les indicará a los alumnos la obligatoriedad de entregar escritos a mano los trabajos y los cuadernos de prácticas, lo que nos permitirá calificar el trabajo personal del alumno, así como asegurar la autoría del mismo 4- MATERIALES, TEXTOS Y RECURSOS DIDÁCTICOS Para llevar a cabo el aprendizaje del módulo, creemos conveniente la consulta del texto siguiente: Biología Molecular y citogenética. Fernando Gómez-Aguado y cols. Ed Altamar. (ISBN ) Esta materia es muy compleja y dado el poco conocimiento de base que los alumnos poseen y el reducido número de horas de la materia, creemos conveniente la utilización de un libro de consulta y estudio. Los recursos didácticos con los que contamos, aparte de los apuntes del profesor, para la realización de todos los cometidos son los siguientes: 6 1. Fotocopias que se reparten para mejorar el aprendizaje con fotografías a color, gráficos o textos 2. Presentaciones digitales sobre diferentes temas. 3. Vídeos y programas de ordenador, además de CD, que ayuden a interiorizar los contenidos o que amplíen conocimientos. 4. Aparataje e instrumental relacionado con algunas de las prácticas que se van a realizar (material de vidrio, pipetas automáticas, baños de distinto tipo, centrífugas, termociclador,

7 ww.altamar.es 7 fuentes, cubetas y soportes de electroforesis, ). 5. Pizarra y ordenador con cañón, para proyectar lo que aparece en pantalla. 6. Reactivos y material fungible para la realización de algunas prácticas. La Bibliografía de consulta que aconsejamos a los alumnos es la siguiente: ALBERTS, B., Biología molecular de la célula, 5ª ed., Barcelona: Omega, Benito Jiménez, César. Genética: Conceptos esenciales. Editorial Médica Panamericana S.A. ISBN-13: DE ROBERTIS, E., Biología celular y molecular, 15 ed. Buenos Aires: El Ateneo, GREEN, M.R. Y SAMBROOK, J., Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 4ª ed., Cold Spring Harbor (NY, EE.UU.): Cold Spring Harbor Laboratory Press, HARVEY, R., «In situ hybridization», capítulo 11, en Immunohistochemical stainings methods, Glostrup (Dinamarca): Dako, HERRÁEZ SÁNCHEZ, A., Texto ilustrado de biología molecular e ingeniería genética, Barcelona: Elsevier España, KARP, G., Biología celular y molecular, México D.F.: McGraw-Hill, LACADENA, J. R., Citogenética, Madrid: Editorial Complutense, LODISH, H., Y DARNELL, J., Biología celular y molecular, 5ª ed., México D.F.: Editorial: Panamericana, LOZANO. J.A., Bioquímica y biología molecular en ciencias de la salud, Madrid: McGraw- Hill/Interamericana de España, Manual para Técnico Superior de Laboratorio Clínico y Biomédico Mérida Moreno. Editorial Médica Panamericana S.A. EAN: R.J. MKINLAY GARDNER, GRANT R SUTHERLAND, LISA G. SHAFFER, Chromosome Abnormalities and Genetic Counseling (Oxford Monographs on Medical Genetics), 4ª ed., Nueva York: OUP USA, MOREL, G., CABALLERO, A.C., Y GALLEGO, R., Hibridación in situ en microscopía óptica, Santiago de Compostela: Servicio de Publicaciones e Intercambio Científico de la Universidad de Santiago de Compostela, SHAFFER, L., MCGOWAN-JORDAN, J., SCHMID, M., ISCN 2013: An International System for Human Cytogenetic Nomenclature. Basilea (Suiza): Karger Medical Scientific, Documento de Aplicación: «Cultivos Celulares», Madrid: Cultek, Guía de Protocolos Utilizados para la obtención de ácidos nucleicos en biobancos. Documentos de la Red Nacional de Biobancos, Madrid: Instituto de Salud Carlos III, Nucleic Acid Isolation and Purification. 4ª ed., Mannheim (RFA): Roche Diagnostics, PCR Applications Manual, 3ª ed., Mannheim (RFA): Roche Diagnostics, Protocols and Applications Guide, Madison (WI, EE.UU.): Promega Corporation, THOMPSON & THOMPSON. Genética en medicina. Editorial:Elsevier Masson ISBN: Tecnología del DNA recombinante, Madrid: Cultek, COMPETENCIAS CLAVE No procede. 6- CRITERIOS DE EVALUACIÓN Reflejados en la tabla adjunta. 7- RESULTADOS DE APRENDIZAJE IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

8 Reflejados en la tabla adjunta. 8- PROCEDIMIENTOS E INSTRUMENTOS DE EVALUACIÓN La finalidad de la evaluación del módulo es la de estimar en qué medida se han adquirido los resultados de aprendizaje previstos en el currículum a partir de la valoración de los criterios de evaluación. Además se valorará la madurez académica y profesional del alumnado y sus posibilidades de inserción en el sector productivo. En aquellas unidades de trabajo que consten de una parte teórica y otra práctica, se valorará la destreza para la realización de la determinación, la adecuada elección de materiales y reactivos, teniendo en cuenta las disposiciones existentes en el laboratorio, y la correcta realización e interpretación de los resultados. Algunas de las determinaciones se realizarán en grupos, lo que implica que los alumnos se responsabilicen de la correcta preparación de reactivos, aparatos etc., pues estos serán posteriormente empleados por otros grupos de alumnos. Algunas de las unidades de trabajo citadas anteriormente y que requieren técnicas muy especializadas, solamente se podrán impartir de manera teórica, para que el alumno tenga una buena base para poder realizarlas en el módulo de FCT. La evaluación positiva del módulo por parte del alumno requiere su asistencia regular a las clases y actividades programadas para las distintas unidades didácticas. La evaluación tendrá como referencia los objetivos generales del ciclo. La evaluación positiva del módulo por parte del alumno requiere su participación de forma activa en las clases y actividades programadas para las distintas unidades didácticas. La evaluación tendrá como referencia los objetivos generales del ciclo. Se realizará una evaluación inicial del alumno. Esta evaluación inicial, que se realizará a comienzo de curso tiene una triple finalidad: - Ofrecer información al profesor para adecuar el tratamiento pedagógico de al asignatura a las peculiaridades de los alumnos. - Delimitar el establecimiento de metas razonables. - Detectar carencias o errores que puedan obstaculizar el proceso de aprendizaje, ofreciendo la oportunidad de subsanarlo antes de iniciar una nueva etapa educativa. El soporte de esta evaluación será una prueba escrita confeccionada con preguntas relativas al módulo a impartir. Como instrumentos de evaluación del alumnado a lo largo del curso se proponen: - Pruebas escritas. Para valorar básicamente los conceptos, como exámenes tipo test, de preguntas cortas, de respuesta sencilla, de problemas teórico-prácticos... - Pruebas y trabajos prácticos, cuaderno de trabajo y/o memorias para valorar básicamente los procedimientos. - Observación continua y directa para valorar básicamente las actitudes. 9- CRITERIOS DE CALIFICACIÓN Siguiendo las líneas generales fijadas, hemos fijado la realización de las siguientes pautas de evaluación y calificación: Evaluación inicial. Evaluaciones trimestrales. 8

9 ww.altamar.es Evaluación de finales de mayo/principios de junio. 1- Evaluación inicial: No tiene carácter calificable, sino que cumple una triple finalidad: - Ofrecer información al profesor para adecuar el tratamiento pedagógico de la asignatura a las peculiaridades de los alumnos. - Delimitar el establecimiento de metas razonables, dado el nivel conceptual de los alumnos. - Detectar carencias o errores que puedan obstaculizar el proceso de aprendizaje. El soporte de esta evaluación será una prueba escrita confeccionada con preguntas relativas a la materia del módulo. 2- Evaluaciones trimestrales: Las evaluaciones calificables serán tres, y dicha calificación se formará con cifras del 0 al 10 sin decimales. Se consideran evaluaciones positivas las iguales o superiores a 5 y negativas las inferiores. La calificación de cada evaluación estará formada por los siguientes apartados: 9 1- Observación directa del alumno en las actividades del aula % de la calificación. Se llevará a cabo mediante preguntas en clase, resolución de las actividades encomendadas, etc. También se valorará la participación y disposición en las prácticas a realizar, y en todas aquellas cuestiones relacionadas con el buen funcionamiento del laboratorio. Además se tendrá en cuenta la cooperación, la actitud y el compromiso con los compañeros y el grupo. 2- Seguimiento de las producciones de los alumnos, controles, trabajos, resúmenes, esquemas, etc % de la calificación. 3- Elaboración del cuaderno de prácticas y actividades % de la calificación. Es indispensable la presentación del cuaderno de prácticas para poder realizar las pruebas de conocimientos específicos, porque es el instrumento más fiable que el profesor tiene para conocer no sólo la asistencia y aprovechamiento de las clases impartidas sino también el hábito de trabajo diario y sistemático del alumnado. En este cuaderno de prácticas solo podrán quedar registradas las que el alumno haya realizado en el aula, por lo que aquellas que el alumno no haya realizado, por causa justificada o no justificada, no serán valoradas por el profesor. La no presentación del cuaderno o los otros trabajos encomendados por el profesor a los alumnos, o la copia de los realizados por otros compañeros supondrá que el alumno suspenda esa evaluación. En caso de que no hubiera más producciones que el cuaderno de prácticas por parte del alumno en una evaluación, el 5% del apartado 2 se sumaría al 15% del cuaderno (del apartado 3), de forma que ese apartado pasaría a puntuar el 20% de la calificación de esa evaluación. 4- Pruebas de conocimientos específicas: Exámenes de contenido teórico-práctico IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

10 70% de la calificación. Dichas pruebas constarán de preguntas o cuestiones que podrán ser de tipo test o de tipo general, con preguntas cortas, temas a desarrollar, problemas relacionados con las unidades, cuestiones relacionadas con las prácticas, etc, dependiendo de las unidades de trabajo, en los que el alumno podrá exponer sus conocimientos acerca de las mismas. El procedimiento de calificación de cada examen estará indicado en la cabecera del mismo. La calificación para los exámenes tipo test será la siguiente: - Respuesta correcta; 1 punto. - Respuesta no contestada: 0 puntos. - Respuesta incorrecta: tendrá una penalización de 1/nº de posibles respuestas. La nota resultante se trasladará a una escala de calificación de Cuando el alumno no supere el apartado 4 (con al menos un 5), no se le realizará el cómputo para esa evaluación de los apartados 1, 2 y 3, y el alumno suspenderá la evaluación. En la calificación de los exámenes escritos, las faltas de ortografía restarán de la nota final del examen, a razón de 0,1 puntos cada falta de ortografía, hasta un máximo de 1,5 puntos. Cuando un alumno falte, por una causa justificada con un documento oficial, a un examen, el mismo se le realizará cuando fuere la recuperación para el resto de los alumnos. Si el alumno en tal caso no aprobara, se le realizaría la recuperación de toda la evaluación, cuando acuerde el profesor. Los alumnos que acudan tarde a un examen, es decir, una vez se haya efectuado el reparto de los exámenes al resto de los compañeros, no podrán entrar a examinarse y se les aplicará el mismo criterio que en el apartado anterior. La calificación final del alumno no tendrá que ser necesariamente la media de las tres evaluaciones, ya que se tendrá en cuenta la evolución del trabajo del alumno durante el curso. A la prueba ordinaria de finales de mayo/principios de junio el alumno asistirá con aquellas evaluaciones que le queden pendientes, y deberá obtener en todas las pruebas que se le realicen la calificación de, al menos, un 5. Para la calificación final de estos alumnos se tendrán en cuenta los mismos criterios que para el resto del alumnado en las distintas evaluaciones. En la misma fecha de la prueba ordinaria los alumnos que hayan aprobado podrán hacer con carácter voluntario una prueba global teórico-práctica de toda la materia, que permita modificar la calificación final obtenida por el alumno aumentándola o disminuyéndola, según los conocimientos que evidencie el alumno. Si el tiempo lo permite, en los dos primeros trimestres habrá exámenes de recuperación teóricoprácticos similares a los de evaluación, y el alumno para aprobar deberá obtener en cada uno de ellos la calificación de, al menos, un 5, aplicándose para la confección de la nota de la recuperación los mismos porcentajes que están escritos en esta programación para las evaluaciones. 10- PROCEDIMIENTO DE RECUPERACIÓN DE EVALUACIONES PENDIENTES A la evaluación ordinaria de finales de mayo/principios de junio acudirá el alumno que tenga pendiente alguna/s de las tres evaluaciones y, tanto los criterios de calificación como los procedimientos de evaluación serán similares a los de las evaluaciones y recuperaciones trimestrales. Los porcentajes aplicables serán los mismos que en las evaluaciones trimestrales En los dos primeros trimestres habrá un examen de recuperación adicional, en enero el de la 10

11 ww.altamar.es segunda evaluación y en abril el de la tercera, que serán similares a los de evaluación, y el alumno para aprobar deberá obtener en ellos la calificación de, al menos, un 5, aplicándose para la confección de la nota de la recuperación los mismos porcentajes que están escritos en esta programación para las evaluaciones, y realizando los mismos tipos de exámenes. En el caso de la tercera evaluación, no hay tiempo para realizar una recuperación adicional, por lo que el alumno que suspenda dicha evaluación, se presentará en la evaluación ordinaria de finales de mayo/principios de junio a la recuperación de ese trimestre. 11- PROCEDIMIENTOS Y ACTIVIDADES DE RECUPERACIÓN DEL MÓDULO PENDIENTE Los alumnos que tengan el módulo pendiente del curso anterior, deberán aprobar un examen teórico-práctico con la calificación de al menos un 5 en la convocatoria de Febrero. Este examen será de tipo test, cuestiones cortas, casos y cuestiones prácticas, y problemas relacionados con la materia. El procedimiento de calificación de cada examen estará indicado en la cabecera del mismo. La calificación para los exámenes tipo test será la siguiente: 11 - Respuesta correcta; 1 punto. - Respuesta no contestada: 0 puntos. - Respuesta incorrecta: tendrá una penalización de 1/nº de posibles respuestas. La nota resultante se trasladará a una escala de calificación de Dicho examen versará sobre todos los contenidos teórico-prácticos del módulo en cuestión. La nota de este examen será la que conformará la nota de este módulo en la convocatoria extraordinaria. En caso de suspender el módulo en la convocatoria de febrero, el alumno tendrá otro examen en la convocatoria de junio, de las mismas características del de la convocatoria de febrero. Este examen deberá aprobarse con, al menos, un 5 para aprobar el módulo. 12- PRUEBA EXTRAORDINARIA Será una prueba calificable que se efectuará a finales de junio, cuya finalidad será la de recuperar a los alumnos que en la ordinaria de finales de mayo/principios de junio no hayan aprobado el módulo. La prueba constará de un examen teórico-práctico sobre todos los contenidos del módulo, que será imprescindible aprobar con la calificación de, al menos, un cinco. Este examen será de tipo test, cuestiones cortas, casos y cuestiones prácticas, y problemas relacionados con la materia. El procedimiento de calificación de cada examen estará indicado en la cabecera del mismo. La calificación para los exámenes tipo test será la siguiente: - Respuesta correcta; 1 punto. - Respuesta no contestada: 0 puntos. - Respuesta incorrecta: tendrá una penalización de 1/nº de posibles respuestas. La nota resultante se trasladará a una escala de calificación de Dicho examen versará sobre todos los contenidos teórico-prácticos del módulo en cuestión Para la confección de la calificación del módulo en la evaluación extraordinaria, se tendrán en cuenta también los trabajos del alumno y el cuaderno de prácticas realizado, por lo que los IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

12 porcentajes aplicables serán los mismos que en la evaluación ordinaria y que figuran en la presente programación. Para la calificación del apartado 1 de los criterios que aparecen en la presente programación, se tendrá en cuenta el trabajo realizado, participación, implicación, actitud de trabajo, etc. del alumno durante todo el curso , y para los apartados 2 y 3 todas las producciones del alumno a lo largo de todo el curso. 13- PROCEDIMIENTO PARA QUE EL ALUMNO Y LAS FAMILIAS CONOZCAN ASPECTOS RELACIONADOS CON LA PROGRAMACIÓN Los aspectos que aparecen reseñados a continuación de la presente programación serán leídos a los alumnos en los primeros días de clase y publicados para su consulta en el aula correspondiente. Estos son los siguientes: - Objetivos - Contenidos y mínimos - Criterios de evaluación - Criterios de calificación Los padres serán informados de los mismos en la reunión que se realizará la semana posterior a aquella en la que se realice la evaluación inicial del grupo. 14- MEDIDAS ORDINARIAS DE ATENCIÓN A LA DIVERSIDAD Se intentará lograr, en la medida de lo posible, acomodar la marcha de las clases, así como la temporalización, a las diferentes características de nuestros alumnos, para lo cual comenzamos el curso realizando una evaluación inicial que nos indique el grado de conocimiento que poseen los alumnos nuevos, y durante el transcurso del tiempo iremos adaptando las explicaciones y la realización de las prácticas a los requerimientos de los distintos miembros del aula. En cualquier caso, las medidas de atención a la diversidad de alumnos que cursan este módulo se recogen en el Plan de Atención a la Diversidad (PAD) del Centro. 15- ADAPTACIONES CURRICULARES No procede. 16- ACTIVIDADES COMPLEMENTARIAS Y EXTRAESCOLARES Los alumnos que lo deseen podrán participar en las actividades que se organicen en los días culturales del instituto. Se intentará planificar con los alumnos una visita un laboratorio de biología molecular, y al Centro de Transfusiones de la CAM. 17- ACTIVIDADES PARA EL FOMENTO DE LA LECTURA EN EL MÓDULO Teniendo en cuenta las directrices del claustro y las del equipo de profesores de la familia de Sanidad, y en referencia a la competencia de comunicación lingüística, desde este módulo vamos a recomendar la lectura de libros, artículos en revistas o medios de comunicación en papel o digitales, que estén relacionados con el módulo presente. En relación con la dicha competencia también en este módulo vamos a valorar especialmente la buena ortografía, caligrafía y redacción, de todos aquellos trabajos, resúmenes, esquemas y producciones de los alumnos. Así mismo, se les indicará a los alumnos la obligatoriedad de entregar escritos a mano los trabajos y los cuadernos de prácticas, lo que nos permitirá valorar los apartados anteriores, así como asegurar la autoría de los mismos. 12

13 ww.altamar.es En los exámenes escritos que realice el alumno, las faltas de ortografía restarán de la nota final del examen, a razón de 0,1 puntos cada falta de ortografía, hasta un máximo de 1,5 puntos. 18- MEDIDAS PARA EVALUAR LA APLICACIÓN DE LA PROGRAMACIÓN DIDÁCTICA Y LA PRÁCTICA DOCENTE En la memoria final de curso se detallará la aplicación de la presente programación, con las peculiaridades propias del grupo sobre el que se ha aplicado. Se realizarán encuestas de satisfacción y de evaluación de la práctica docente al alumnado y los resultados de las mismas serán publicados en la memoria final de curso del departamento. 13 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

14 DEPARTAMENTO: SANITARIA CICLO FORMATIVO: LABORATORIO BIOMÉDICO MÓDULO: BIOLOGÍA MOLECULAR 1. Contenidos 2. Criterios de Evaluación 3. Resultados de aprendizaje 4. Criterios de calificación Unidad didáctica 1: Laboratorios de Se han identificado las áreas de biología molecular y citogenética trabajo de cada laboratorio. Caracteriza los procesos que hay que No hay modificación Biología molecular y citogenética Se han definido las condiciones de realizar en los laboratorios de citogenética y del apartado 6 El laboratorio de biología molecular seguridad. biología molecular, relacionándolos con los - El equipamiento materiales y equipos. Se han descrito las técnicas - La estructura del laboratorio realizadas en cada área. - El flujo de trabajo Se han identificado los equipos - Las condiciones de trabajo básicos y materiales. -El uso eficiente de los recursos Se han seleccionado las normas El laboratorio de citogenética y para la manipulación del material y cultivos celulares los reactivos en condiciones de - El equipamiento esterilidad. - La estructura del laboratorio Se ha descrito el protocolo de - Las condiciones de trabajo: trabajo en la cabina de flujo técnica aséptica laminar. La seguridad en el laboratorio Se ha establecido el procedimiento - Bioseguridad de eliminación de los residuos - Seguridad química generados. - Equipamiento y normas de seguridad - El manual de seguridad Gestión de residuos 14

15 ww.altamar.es Unidad didáctica 2: Cultivos celulares Tipos de cultivos celulares Aplicaciones de los cultivos celulares Biología de las células en cultivo - La curva de crecimiento del cultivo - Formas de crecimiento - Comportamiento vital tras sucesivos pases Factores que intervienen en el cultivo - El soporte físico - Composición y propiedades del medio de cultivo - La atmósfera gaseosa - Condiciones de incubación Procedimientos de cultivo celular - Disgregación celular - Recuento y viabilidad celular - Descongelación de células - Inicio del cultivo (siembra) - Mantenimiento del cultivo - Conservación de células Contaminaciones Se han caracterizado los métodos de cultivo celular que se aplican en los estudios citogéneticos. Se han seleccionado los tipos de medios y suplementos en función del cultivo que hay que realizar. Se han realizado los procedimientos de puesta en marcha, mantenimiento y seguimiento del cultivo. Se ha determinado el número y la viabilidad celular en los cultivos en la propagación del cultivo. Se han tomado las medidas para la eliminación de la contaminación detectada. Se han definido los procedimientos de conservación de las células. Se ha trabajado en todo momento en condiciones de esterilidad. Realiza cultivos celulares describiendo los pasos del procedimiento No hay modificación del apartado 6 15 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

16 Unidad didáctica 3: Principios básicos de citogenética El cromosoma Estructura del cromosoma metafásico Tipos de cromosomas El número de cromosomas El ciclo celular Interfase Mitosis Tinción y bandeo de cromosomas Métodos de tinción Técnicas de bandeo cromosómico Idiograma y nomenclatura de bandas Mutaciones y tipos Mutaciones génicas Mutaciones cromosómicas Se han definido las características morfológicas de los cromosomas humanos y sus patrones de bandeado. Se han caracterizado las anomalías cromosómicas más frecuentes. Se han descrito las aplicaciones de los estudios cromosómicos en el diagnóstico clínico. Aplica técnicas de análisis cromosómico en sangre periférica, líquidos y tejidos, interpretando los protocolos establecidos. No hay modificación del apartado 6 16

17 ww.altamar.es Unidad didáctica 4: Citogenética humana y análisis cromosómico Cariotipo estándar de sangre periférica Cultivo de linfocitos Obtención de extensiones de metafases Tinción y bandeo cromosómicos Análisis cromosómico Recuento y análisis cromosómico de metafases completas Ordenamiento y emparejamiento Automatización del análisis cromosómico Nomenclatura citogenética y fórmula cromosómica Cariotipo de alta resolución Citogenética y diagnóstico prenatal Cariotipo de vellosidad coriónica Cariotipo de líquido amniótico Diagnóstico preimplantacional Citogenética y cáncer Se ha puesto en marcha el cultivo. Se ha realizado el sacrificio celular y la preparación de extensiones cromosómicas. Se han realizado las técnicas de tinción y bandeado cromosómico. Se ha realizado el recuento del número cromosómico y la determinación del sexo en las metafases analizadas. Se han ordenado y emparejado los cromosomas por procedimientos manuales o automáticos. Se ha determinado la fórmula cromosómica. Aplica técnicas de análisis cromosómico en sangre periférica, líquidos y tejidos, interpretando los protocolos establecidos No hay modificación del apartado 6 17 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

18 Unidad didáctica 5: Ácidos nucleicos y enzimas asociadas Los ácidos nucleicos Estructura y composición química Propiedades fisicoquímicas El ADN Estructura del ADN Organización de las moléculas de ADN El ARN Estructura del ARN Tipos y organización del ARN El flujo de la información genética Replicación del ADN Transcripción del ADN a ARN Traducción del ARNm Enzimas empleadas en biología molecular Nucleasas Endonucleasas de restricción ADN polimerasas Otras enzimas Se han definido las características de los diferentes ácidos nucleicos y su estructura. Se han caracterizado los tipos de ARN y su organización. Se ha descrito el flujo de la información genética. Se han caracterizado as enzimas empleadas en biología molecular. Aplica las técnicas de extracción de ácidos nucleicos a muestras biológicas, seleccionando el tipo de técnica en función de la muestra que hay que analizar. No hay modificación del apartado 6 18

19 ww.altamar.es Unidad didáctica 6: Extracción y purificación de ácidos nucleicos Extracción y purificación: la primera etapa Pretratamiento de las muestras biológicas Sangre Cultivos celulares Tejidos animales o vegetales frescos Tejidos fijados en formol e incluidos en parafina Otras muestras Extracción de ácidos nucleicos La solución de lisis Tratamientos en células con pared celular Verificación del resultado de la lisis Consideraciones en la extracción del ADN Purificación de los ácidos nucleicos Purificación con solventes orgánicos Precipitación con sales (salting-out) Cromatografía de intercambio iónico Cromatografía de adsorción Purificación mediante esferas magnéticas Ultrafiltración Purificación de plásmidos Consideraciones especiales para la purificación de ARN Automatización del proceso de extracción/purificación Se ha descrito el procedimiento de extracción de ácidos nucleicos. Se han definido las variaciones con respecto al procedimiento, dependiendo del tipo de muestra. Se han preparado las soluciones y los reactivos necesarios. Se ha realizado el procesamiento previo de las muestras. Se han obtenido los ácidos nucleicos, ADN o ARN, siguiendo protocolos estandarizados. Se han caracterizado los sistemas automáticos de extracción de ácidos nucleicos. Se ha comprobado la calidad de los ácidos nucleicos extraídos. Se ha almacenado el ADN o ARN extraído en condiciones óptimas para su conservación. Se ha trabajado en todo momento cumpliendo las normas de seguridad y prevención de riesgos. Aplica las técnicas de extracción de ácidos nucleicos a muestras biológicas, seleccionando el tipo de técnica en función de la muestra que hay que analizar. No hay modificación del apartado 6 19 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

20 Ventajas de la automatización Tipos de instrumentos automáticos Calidad de los ácidos nucleicos purificados Integridad de los ácidos nucleicos Pureza de los ácidos nucleicos Concentración de ácidos nucleicos Funcionalidad de los ácidos nucleicos purificados Almacenamiento de los ácidos nucleicos purificados Condiciones para la integridad de las muestras Trazabilidad de las muestras 20

21 ww.altamar.es Unidad didáctica 7: Hibridación de ácidos nucleicos Concepto de hibridación y su aplicación en biología molecular Bases teóricas de la hibridación Desnaturalización Renaturalización Hibridación Tipos y características de las sondas Características generales Sondas de ADN Sondas de ARN Sondas químicas sintéticas de ácidos nucleicos El marcaje de las sondas Tipos de marcadores Métodos de marcaje Purificación de la sonda marcada Fases de la hibridación Fase de prehibridación Fase de hibridación Lavado de poshibridación Fase de detección del híbrido Se ha definido el concepto de sonda y se han caracterizado los tipos de marcaje. Se ha descrito el proceso de hibridación, las fases y los factores que influyen en la misma. Aplica técnicas de hibridación con sonda a las muestras de ácidos nucleicos, cromosomas y cortes de tejidos, interpretando los protocolos establecidos. No hay modificación del apartado 6 21 IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

22 Unidad didáctica 8: Técnicas de hibridación de ácidos nucleicos Técnicas de hibridación según el medio Dot blot Protocolo del dot blot Aplicaciones del dot blot Southern blot Protocolo del Southern blot Aplicaciones del Southern blot Northern blot Protocolo del Northern blot Aplicaciones del Northern blot Microarrays Fabricación de microarrays Protocolo de trabajo genérico Aplicaciones de los microarrays Técnica de captura de híbrido Tecnología del ADN ramificado ISH. Tipos de muestras Preparaciones de cromosomas en metafase Preparaciones de núcleos interfásicos desnudos Extensiones citológicas Secciones de tejido ISH fl uorescente (FISH) Protocolo genérico FISH interfásica FISH metafásica ISH cromogénica (CISH) Protocolo genérico Controles Se han caracterizado las técnicas de hibridación en soporte sólido, cromosomas y cortes de tejidos. Se ha seleccionado el tipo de sonda y de marcaje, en función del sistema de detección. Se ha realizado el procedimiento siguiendo el protocolo de trabajo seleccionado. Se ha verificado el funcionamiento de la técnica. Se han registrado los resultados en los soportes adecuados. Se ha trabajado de acuerdo con las normas de seguridad y prevención de riesgos. Aplica técnicas de hibridación con sonda a las muestras de ácidos nucleicos, cromosomas y cortes de tejidos, interpretando los protocolos establecidos No hay modificación del apartado 6. 22

23 ww.altamar.es Unidad didáctica 9: La técnica de PCR y la electroforesis Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) Bases teóricas de la PCR Los cebadores o primers ADN polimerasas termoestables El ciclo básico de una PCR Productos de amplificación de la PCR PCR estándar o convencional La mezcla de reacción Preparación de las muestras Programación del termociclador Análisis de los productos amplificados Modalidades de la PCR estándar PCR con inicio en caliente PCR de grandes fragmentos PCR de alta fidelidad Otras técnicas de PCR PCR anidada PCR múltiple PCR con transcripción inversa (RT- PCR) PCR a tiempo real Cinética de la amplificación Sistemas fluorescentes de detección de amplicones Aplicaciones de la PCR a tiempo real. La electroforesis en geles de agarosa y poliacrilamida La electroforesis convencional La electroforesis capilar Se ha descrito la técnica de PCR, sus variantes y aplicaciones. Se han seleccionado los materiales y reactivos para realizar la amplificación. Se ha preparado la solución mezcla de reactivos en función del protocolo, la técnica y la lista de trabajo. Se han dispensado los volúmenes de muestra, controles y solución mezcla de reactivos, según el protocolo. Se ha programado el termociclador para realizar la amplificación. Se ha seleccionado el marcador de peso molecular y el tipo de detección en función de la técnica de electroforesis que hay que realizar. Se han cargado en el gel el marcador, las muestras y los controles. Se han programado las condiciones de electroforesis de acuerdo con el protocolo de la técnica. Se ha determinado el tamaño de los fragmentos amplificados. Aplica técnicas de PCR y electroforesis al estudio de los ácidos nucleicos, seleccionando el tipo de técnica en función del estudio que hay que realizar. No hay modificación del apartado IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

24 Unidad didáctica 10: Clonación de ácidos nucleicos Los métodos de clonación molecular Componentes de la clonación Los vectores de clonación Células hospedadoras Fases del proceso de clonación Creación de un vector recombinante Introducción del vector en la célula hospedadora Selección e identificación de clones recombinantes Tasa de transformación Bibliotecas de ADN Tipos de bibliotecas de ADN Análisis de una biblioteca de ADN Aplicaciones de la clonación molecular Se ha descrito el proceso de clonación de ácidos nucleicos. Se han caracterizado las enzimas de restricción, los vectores y las células huésped utilizadas en las técnicas de clonación. Se han utilizado programas bioinformáticos para obtener información sobre el inserto que se quiere clonar. Se ha detallado la selección de las células recombinantes. Determina los métodos de clonación y la secuenciación de ácidos nucleicos, justificando los pasos de cada procedimiento de análisis. No hay modificación del apartado 6. 24

25 ww.altamar.es Unidad didáctica 11: Métodos de secuenciación de ácidos nucleicos La secuenciación de los ácidos nucleicos Método químico de Maxam y Gilbert Métodos enzimáticos de terminación de cadena Método de Sanger Variaciones del método de Sanger Secuenciación automática de 1ª generación Reacciones de polimerización. PCR Fases automatizadas en secuenciador Secuenciación a gran escala Secuenciación masiva Fase de preparación del ADN molde Reacciones de secuenciación Secuenciación de 3ª generación Secuenciación ion torrent Secuenciación por nanoporos Secuenciación de ARN Se ha definido el fundamento y las características de los métodos de secuenciación. Se ha descrito el procesamiento de las muestras que hay que secuenciar. Se han caracterizado los secuenciadores automáticos y los programas informáticos utilizados en las técnicas de secuenciación. Se han establecido los pasos que hay que seguir en la lectura e interpretación de las secuencias. Determina los métodos de clonación y la secuenciación de ácidos nucleicos, justificando los pasos de cada procedimiento de análisis. No hay modificación del apartado IES PRADO DE SANTO DOMINGO Biología molecular. Curso 2017/18

26 Unidad didáctica 12: Aplicación de las técnicas de biología molecular en medicina forense Genética forense y bioinformática Organización del ADN humano ADN repetido en tándem ADN repetido disperso Polimorfismos Polimorfismos de longitud Polimorfismos de secuencia La huella genética Polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción (RFLP) Análisis de STR mediante PCR Análisis de SNP Análisis del ADN mitocondrial Análisis de polimorfismos del cromosoma Y Análisis estadístico de los datos Análisis en la identificación de restos y criminalística Análisis en los estudios de paternidad Bioinformática Bases de datos de secuencias Análisis de secuencias Diseño de cebadores Portales bioinformáticos Se han descrito las aplicaciones de los procedimientos de clonación y secuenciación en el diagnóstico clínico y en la terapia genética. Determina los métodos de clonación y la secuenciación de ácidos nucleicos, justificando los pasos de cada procedimiento de análisis. No hay modificación del apartado 6. 26

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Last Updated: 12/26/2022

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